【Serumwerk】从酵母球质体中分离液泡、前液泡、液泡下囊泡、分泌囊泡和Cvt囊泡的分离

【Serumwerk】从酵母球质体中分离液泡、前液泡、液泡下囊泡、分泌囊泡和Cvt囊泡的分离

小白求助 前辈指路


从酵母球质体中分离液泡、前液泡、液泡下囊泡、分泌囊泡和Cvt囊泡的分离不成功、实验做不出来怎么办?新手小白迫切求助,希望各位前辈在文章下方留言,分享自己的经验,为小白们答疑解惑!


溶液制备


A. OptiPrep™

B. 洗涤缓冲液:10mm DTT, 10mm Tris-SO4, pH 9.4

C. 球质体缓冲液:1 M山梨醇,20 mM Pipes-KOH, pH 6.8。

D. 球体溶解培养基:200 mM山梨醇,20 mM Pipes-KOH, pH 6.8

E. 多聚蔗糖溶液:4%,10%和12% (w/v)多聚蔗糖溶液D。

F. 发泡介质:20 mM Pipes-KOH, pH 6.8


试验方法


球体隔离

1. 在OD600为0.8-1.2(根据需要放大或缩小)时获取细胞(20 OD600单位),并在溶液B中洗涤一次。

2. 在溶液B (OD600 = 2.0)中重悬,在30℃下振荡孵育15分钟。

3. 收集细胞并重新悬浮于溶液C (OD600 = 1.0)中。

4. 通过温和倒置溶解酶20T (0.2 mg),并在30℃下偶尔轻轻摇晃15分钟。

5. 以3000 g保存3 min收获球质体。

6. 将颗粒重新悬浮于溶液C中并转移至微离心管中。

7. 将球质体悬浮液以3000 g离心3 min

液泡的分离

对于700-800 OD600个单位的球质体

1.将球体球重悬于1 ml溶液D中。

2.在23℃孵育5分钟(在2.5分钟时倒置一次)。

3.通过5000 g离心5 min使含有空泡的部分沉淀。

4.将液泡小球悬浮于4 ml 12%多聚蔗糖溶液中。

5.在13 ml管中为摇桶转子层各4 ml样品中加入12%多聚蔗糖、10%多聚蔗糖和4%多聚蔗糖及1 ml溶液D。

6.在8℃下,100,000 g离心90分钟。

7.从4%多聚蔗糖/溶液D界面收集液泡。

8.用2体积的溶液D稀释液泡部分,60000 g离心15分钟收集。

空泡和空泡下囊泡的分离

1.梯度溶液:用溶液F稀释溶液A,给予11%和22% (w/v)碘克沙醇(分别为1.06和1.12 g/ml)。

2.将液泡部分悬浮于0.2 ml F溶液中。

3.在大约2 ml的TLS55摇摆桶转子层管中,0.5 ml 22% (w/v)碘克沙醇,1.3 ml 11% (w/v)碘克沙醇和0.3 ml样品。

4.在12℃下以16万g离心60 min。

5.液泡囊泡在溶液F/11%碘克沙醇界面,液泡下囊泡在11%/22%碘克沙醇界面。

从酵母球质体裂解液中分离液泡和Cvt囊泡(Vacuoles and Cvt vesicles)

1.配制含10 mM k管的50% (w/v)碘克沙醇工作液(WS),pH 6.8,用相同的缓冲液稀释,得到30%,25%和19% (w/v)碘克沙醇梯度溶液。

2.在水中裂解球质体;将裂解液调整到10 mM K-Pipes, pH 6.8,并与WS混合,使最终碘克沙醇浓度为37% (w/v)。

3.在Beckman SW41Ti管中,Sorvall TH641(或类似物)用2 ml每种梯度溶液和K-Pipes缓冲液覆盖3 ml该裂解产物以填充管。

4.在4℃下以约80,000 g离心4 h。

5.缓冲/19%界面处出现空泡带,37%/30%界面处出现Cvt囊泡。


方法注释


裂解介质和梯度溶液

蛋白酶抑制剂应添加到用于球质体的溶液中,并在后续操作的溶液中。

从梯度中获取带状材料

在这些分辨率良好的分离中,感兴趣的材料可以简单地吸入装有扁头金属套管的注射器(径约0.8毫米)。小容量的导管最好通过导管穿刺或从半月板抽吸来卸载。

结果分析

小体积不连续碘克沙醇梯度的组分在SDS凝胶上运行,并检测前体API (prAPI)和ALP(分别为液泡下和液泡标记物)。样品/11%碘克沙醇界面处的粗液泡分数(V)和带状物质界面富集于液泡囊泡(VV), 11/22%碘克沙醇界面富集于液泡下囊泡(SV),以及两个11%和22%碘克沙醇层(LD和HD)。

液泡和前液泡分离

由Chen和Kaplan设计的连续碘克沙醇梯度系统主要用于研究酵母线粒体对铁的摄取,也分离液泡和液泡前组分。

在对酵母Myo2p的研究中,Chang等使用了小体积的自生成碘克沙醇梯度。2000 g/10 min酵母裂解物上清液在150 mM KCl, 2 mM MgCl₂,1 mM EGTA, 0.2% TX100, 2 mM DTT, 20 mM HEPES-NaOH, pH 7.2下在2000 g 10 min, 30,000 g 30 min和100,000 g 1h下进行差速离心。最终离心包括0.1 ml 60% (w/v)蔗糖垫。将100,000 g颗粒重悬于0.75 ml裂解培养基(加上缓冲液)和0.85 ml OptiPrep™中。在小体积转子(贝克曼TLA 120.2)中以287,000 g将其离心2 h。虽然垂直(或近垂直)转子通常用于产生自生成的梯度,但这种小体积的固定角转子具有理想的低沉降路径长度(约15毫米)。在分泌泡和核糖体中,靠近梯度顶部的液泡也显示出独特的带型。


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