【ATCC】人皮下前体脂肪培养技术
人皮下前体脂肪培养不成功、实验做不出来怎么办?新手小白迫切求助,希望各位前辈在文章下方留言,分享自己的经验,为小白们答疑解惑!
细胞复苏
1)根据细胞总数,确定接种所需的培养表面积,以达到5,000 cells/cm2初始接种密度。
2)准备所需培养容器。每25 cells/cm2的表面积加入5 mL完全生长培养基。将培养容器放入37°C、5% CO2、湿度控制的细胞培养箱中预平衡30分钟。期间,取出冻存细胞,并在37°C的水浴中轻轻摇动使细胞迅速解冻(大约1~2分钟)。一旦内容物解冻,立即将冻存管从水浴中取出,并通过浸入或喷洒70%乙醇进行消毒。从此时起,所有操作都应在严格的无菌条件下进行。
3)将适量的完全生长培养基加入至无菌离心管管中。使用巴氏管,将细胞从冷冻瓶转移离心管中。轻轻吸取细胞以均匀悬浮液,不要离心。细胞计数后根据推荐的细胞接种密度,将细胞加入预平衡的培养容器中轻轻摇动以使细胞分布均匀。
4)将接种的培养容器放入细胞培养箱中培养。在进一步处理细胞之前,孵育至少24小时。
细胞传代
1)当细胞密度达到70%~80%时,进行传代。
2)在解离之前,将原代细胞的Typsin-EDTA(ATCC PCS-999-003)和胰蛋白酶中和溶液(ATCC PCS-999-004)室温平衡。将完全的生长培养基加热至37°C,以便与细胞一起使用。
3)小心吸去废液(不要干扰细胞单层)。用3~5 mL D-PBS(ATCC 30-2200)洗涤细胞层,以去除残留的血清。
4)向每个细胞培养容器内加入Trypsin-EDTA溶液(每25cm2加1~2mL)轻轻晃动,确保Trypsin-EDTA溶液完全覆盖细胞。
5)显微镜下观察细胞。当细胞相互分离并变圆(通常在3~5分钟内),并轻轻从多个方向敲击培养容器,促使细胞从表面脱离。当大部分细胞脱离时,迅速加入相同体积的胰蛋白酶中和溶液(ATCC PCS-999-004)。轻轻吸取或旋转培养物,确保所有Trypsin-EDTA溶液已被中和。
6)将解离的细胞转移到无菌离心管中,同时向容器中加入3~5 mL D-PBS(ATCC 30-2200),以收集残留细胞。将细胞/D-PBS悬浮液转移到含有胰蛋白酶-EDTA解离细胞的离心管中。
7)250 g的速度离心细胞3~5分钟。吸除上清液,并将细胞重悬于2~8毫升新鲜的、预热的完全生长培养基中。计数细胞,并以5,000 cells/cm2的密度接种新的培养容器中,并放入细胞培养箱中。每隔2~3天换液一次,然后再进一步处理细胞。
细胞换液
1)将适当的完全生长培养基提前至于37°C进行预热(避免多次预热)。
2)接种后24~36小时,将细胞从培养箱箱中取出,显微镜下观察以确定细胞的汇合度。
3)小心地去除废液,不要干扰细胞单层。按每25 cm2的表面积加入5 mL新鲜预热的完全生长培养基,并将烧瓶放回培养箱中。
4)经过24~48小时,再次观察,以确定细胞的汇合度。如果还没有准备好传代,重复上述步骤。当培养达到约70%~80%的汇合度时,准备进行传代。
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