【ScienCell】人毛发生发基质细胞(HHGMC)产品使用攻略

【ScienCell】人毛发生发基质细胞(HHGMC)产品使用攻略

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人毛发生发基质细胞培养不成功、实验做不出来怎么办?新手小白迫切求助,希望各位前辈在文章下方留言,分享自己的经验,为小白们答疑解惑!


人毛发生发基质细胞

(HHGMC)

生发基质是毛球基部毛乳头周围的一个区域,该区域包含一群过渡扩增基质细胞,是毛发生长和色素沉着发生部位。在活跃的毛发生长阶段,生发基质细胞迅速增殖并分化为所有毛囊层的细胞谱系,使毛发生长。角角质化是指中间丝蛋白复合物和角质相关蛋白基质的终末分化,使毛发锚定在毛囊中。毛囊细胞具有免疫特权,并且植入的真皮乳头细胞的生发基质具有诱导新毛囊形成的能力,这表明使用毛囊细胞植入可能治疗脱发。

HHGMC分离自人头皮组织,间充质细胞形态,可通过fibronectin和CD105特异性抗体的免疫荧光进行鉴定。


培养方式


培养瓶:纤连蛋白(Bovine Plasma Fibronectin, 2 µg/cm2)包被培养瓶。

培养基:HHGMC在所提供的MSCM完全培养基(含基础培养基,5% FBS、1% MSCGS、1% P/S)中培养。

操作步骤

1) 包被纤连蛋白(2 µg/cm2)培养瓶的准备(T-75培养瓶):将10 mL无菌的Dulbecco's磷酸盐缓冲盐(DPBS)与150 µL纤连蛋白原液混匀后加入到T-75培养瓶中,将培养瓶放置在37°C的孵育箱中过夜(或至少2小时)。在铺细胞前将未凝固纤连蛋白溶液吸出(可重复使用2次),加入20 mL完全培养基(T-75培养瓶)。

2) MSCM完全培养基的配制:用移液管将恢复至室温的FBS(#0025)、MSCGS补充剂轻轻摇晃后全部转移到基础培养基中,并用培养基清洗补充管以恢复整个体积,然后摇晃以混匀完全培养基。

3) 吸出未凝固的纤连蛋白溶液,T-75中加入20 mL的完全培养基,将解冻后的细胞小心加入到培养基中,十字交叉法轻柔平晃培养瓶。(注:不建议在解冻后对细胞进行稀释和离心,因为这些与培养物中残留DMSO的作用相比,这些作用对细胞的损伤更大;将HHGMC置于纤连蛋白包被的培养瓶中,促进生长同样重要。)

换液:培养开始后16小时内不要干扰培养。次日更换培养液,去除残留的DMSO和未贴壁细胞。之后每三天更换一次培养基,直到培养达到大约70%的密度。一旦培养达到大约70%的密度,每隔一天更换一次培养基,直到培养达到大约90%的密度。

传代:当细胞密度达到90%时进行传代。

1) 将T/E、包被培养瓶、DPBS、培养基提前置于室温平衡(不建议37℃加热)。

2) 弃除旧培养基,并用DPBS清洗细胞后吸除加入5 mL DPBS和5 mL 0.05% T/E solution 轻柔晃动培养瓶后放入37℃培养箱(注:原代细胞传代时请勿使用未稀释的胰蛋白酶),一段时间后镜下观察,待细胞完全变圆、脱落,轻轻拍打底部和侧面,加入2 mL FBS,将细胞悬液转移至15 mL离心管中,1000 rpm离心5 min,用新培养基重悬细胞沉淀后计数,根据5000 cells/cm2的密度传代至预先用纤连蛋白包被的培养瓶中。

生长条件

在CO2浓度为5%,温度为37℃,相对湿度(RH)为95%的细胞培养箱中培养。


表 1  HHGMC培养材料


参考文献

[1] Rogers G. (2004) “Hair follicle differentiation and regulation.” Int J Dev Biol. 48: 163-70.

[2] Barker CF, Billingham RE. (1977) “Immunologically privileged sites.” Adv Immunol. 25: 1-54.

[3] Teumer J, Cooley J. (2005) “Follicular Cell Implantation: An Emerging Cell Therapy for Hair Loss.” Semin Plast Surg. 19: 193-200.

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