【GeneFrontier】重组合无细胞蛋白合成系统(Reconstituted Cell-free Protein Synthesis System)PUREfrex®
PUREfrex® 试剂盒是在东京大学的Takuya Ueda教授所发明的PUREsystem* 技术基础上,新开发的一款重组合无细胞蛋白合成试剂盒。
该反应系统由蛋白、核糖体、氨基酸和、NTPs组成。进行蛋白表达仅需将编码目标蛋白的模板DNA或mRNA加入到反应体系中,然后孵育2-4小时即可完成反应,且无需担心高背景影响到下游应用。
本试剂盒是各组分经过纯化再重新组合而成,而非直接从大肠杆菌中提取,RNase、β-半乳糖苷酶以及脂多糖(LPS)污染已受到严格控制。PUREfrex® 试剂盒中的所有蛋白组分都不带标签,因此目的蛋白可融合任意标签进行纯化和检测。
特点
◆可同时加入多种模板进行反应,以合成Fab(带二硫键)及多聚体等带二级结构的多肽
◆可合成活细胞难以合成的强毒性蛋白
◆可直接使用PCR产物作为模板DNA
◆单位体积内合成的蛋白量几乎恒定,不随反应体积变化而产生显著差异
◆操作简便,仅需在37℃孵育数小时
◆产品经优化升级,合成量大大提高
◆可合成带标签的蛋白用于下游纯化和检测
使用PUREfrex® 系统进行蛋白合成
应用 | |
制备蛋白 | ●原核蛋白 ● 膜蛋白 ● 含二硫键蛋白 ● 真核蛋白 ● 活性IgG[1] ● 含有非天然氨基酸的蛋白 |
蛋白基础研究 | ● 蛋白间相互作用 ● 蛋白二级结构研究 ● 抗体高通量筛选 |
体外展示技术 | ● 核糖体展示技术 ● mRNA展示技术 |
无细胞表达的优势
试剂盒组成
试剂 | 体积 | 成分说明(3)可定制 | 保存温度 |
溶液 I (白盖) | 125μL | 氨基酸,核苷酸,tRNA和酶的底物等 | -20°C |
溶液 II (黑盖) | 12.5μL | 蛋白,保存于含30%甘油的缓冲液 | -20°C or -80°C(1) |
溶液 III (红盖) | 12.5μL×2 | 核糖体(20 μM) | -80°C(1) |
DHFR DNA(透明盖)(2) | 10 μL | 对照DNA,含有编码大肠杆菌DHFR基因的PCR产物(20 ng/μL) | -20°C |
使用前请置于-80°C保存
(1)剩余的溶液应快速在液氮、干冰或乙醇中冻结,并保存于-80℃。必要时分装剩余溶液,并尽可能避免反复冻融。
(2)50 μL反应体系中加入2.5 μL DHFR DNA。
(3) 关于溶液I、溶液 II和溶液III,可根据客户需求,去除特定的成分,出售可定制试剂盒。
添加剂
DS supplement
加入本品能为二硫键形成创造最适的环境。含氧化型谷胱甘肽(GSSG)和作为二硫键异构酶的大肠杆菌DsbC,作为氧化剂创造氧化环境。
DnaK Mix
是高度纯化的大肠杆菌来源的DnaK、DnaJ、GrpE蛋白以适当的浓度比例预混后的溶液。通过在单独的PUREfrex®反应液或添加了DS supplement合成蛋白时添加DnaK Mix,可以更易获得难以独自形成高级结构的活性蛋白。
GroE Mix
是高度纯化后的大肠杆菌来源的GroEL、GroES蛋白以适当的浓度比例预混后的溶液。
在PUREfrex® 反应液合成蛋白时添加GroE Mix,可以更易获得难以独自形成高级结构的活性蛋白。
产品列表
产品编号 | 产品名称 | 规格 | 备注信息 |
GFK-PF201-0.25-EX | PUREfrex® 2.0 | 1 kit | 供250 μL反应使用 |
GFK-PF201-0.25-5-EX | PUREfrex® 2.0 | 1 kit | 供250 μL×5次反应使用 |
GFK-PF213-0.25-EX | PUREfrex® 2.1 | 1 kit | 供250 μL反应使用 |
GFK-PF213-0.25-5-EX | PUREfrex® 2.1 | 1 kit | 供250 μL×5次反应使用 |
GFK-PF003-0.5-EX | DnaK Mix | 1 kit | 供500 μL反应使用 |
GFK-PF004-0.5-EX | GroE Mix | 1 kit | 供500 μL反应使用 |
GFK-PF005-0.5-EX | DS supplement | 1 kit | 供500 μL反应使用 |
备注:
PUREfrex® 已升级到2.0,比第一代产品表达量更高,污染物水平更低;
PUREfrex® 2.1比2.0更适合二硫键的形成。
PUREfrex®定制试剂盒可按客户要求,在PUREfrex® 1.0或2.0配方基础上进行定制。
上述试剂仅供实验研究用,不可用作“医药品”、“食品”、“临床诊断”等。
参考文献
[1] Murakami, S, et al.(2019). Constructive approach for synthesis of a functional IgG using a reconstituted cell-free protein synthesis system. Scientific Reports, 9(1), 671.成功合成了IgG1,IgG2和IgG4的活性形式;抗HER2抗体曲妥珠单抗的峰值产量达124μg/mL。
[2] Natan, E., et al. (2018). Cotranslational protein assembly imposes evolutionary constraints on homomeric proteins. Nature structural & molecular biology, 25(3), 279.
[3] Kuruma, Y. & Ueda, T. (2016). Corrigendum: the pure system for the cell-free synthesis of membrane proteins. Nature Protocols, 11(3), 616.
[4] Murakami, H., et al. (2006). A highly flexible tRNA acylation method for non-natural polypeptide synthesis. Nature Methods, 3(5), 357-359.
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